NADPH氧化酶(NAO)活性检测试剂盒 微板法
产品编号 | 产品名称 | 包装规格 | 价格 |
NBS8103-48T | NADPH氧化酶(NAO)活性检测试剂盒 微板法 | 48T | 4490 |
产品简介:
NADPH氧化酶(NAO)是一个典型的膜蛋白,催化NADPH氧化生成NADP+,并将电子传递给氧原 子从而产生超氧阴离子。广泛存在于动物、植物和真菌中。该酶异常可导致人慢性肉芽肿病(GCD),在植物中,该酶与其抗病性和各种胁迫有密切关系。
NADPH氧化酶(NAO)将NADPH氧化为NADP+的同时生成超氧阴离子(O2.-),接着与显色剂反应 生成水溶性的黄色物质。对照通过添加该酶的特异性抑制剂DPI排除背景值。最终检测生成的有色物质在 450nm 处的吸光值,即可计算得出NAO酶活性大小。
保存条件:
-20℃保存,六个月有效。
产品组成:
组分 | 规格 | 保存 | 备注 |
提取液 | 60mL×1 瓶 | 2-8℃保存 | |
试剂一 | 0.25mL×1 瓶 | -20℃保存 | 若凝固可放置室温或25℃水浴溶解。 |
试剂二 | 1mL×1 瓶 | -20℃保存 | |
试剂三 | 粉末mg×2支 | -20℃保存 | 用前甩几下或离心使粉剂落入底部,分别加0.55mL蒸馏水溶解备用。用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融,三天内用完。 |
试剂四 | 1mL×1 支 | -20℃保存 |
产品使用:
建议正式实验前,选取 2 个样本做预测定,了解实验样品情况,熟悉流程,避免样本和试剂浪费!
一、样本准备:
(a) 组织样本:取约0.1g组织,加入1mL提取液,在4ºC或冰浴进行匀浆(或使用各类常见匀浆器)。 4ºC×12000rpm 离心10min,取上清作为待测液;
【注】:若增加样本量,可按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。 (b) 细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;取约500万细菌或细胞加入1mL 提取液,超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000rpm 4℃离 心10min,取上清,置冰上待测。
【注】:若增加样本量,可按照细菌/细胞数量(104):提取液(mL)为500~1000:1的比例进行提取。
(c) 液体样品:直接检测;若浑浊,离心后取上清检测。
二、上机检测:
(a) 酶标仪预热30min以上,设定温度37℃,调节波长至450nm。
(b) 所有试剂解冻至室温(25℃)。
(c) 在96孔板中依次加入:
试剂名称(μL) | 测定管 | 对照管 |
样本 | 20 | 20 |
提取液 | 150 | 145 |
试剂一 | 5 | |
37℃孵育5min(可能会产生沉淀,但不影响后续测定) | ||
试剂二 | 10 | 10 |
试剂三 | 10 | 10 |
试剂四 | 10 | 10 |
37℃避光孵育20min,于450nm读取吸光值A,ΔA=A测定-A对照。 | ||
【注】若ΔA的值在零附近,可以延长反应时间T(如至40min或更长),则改变后的反应时间T需代入公式重新计算。
三、含量计算:
1、按样本蛋白浓度计算:
酶活定义:每毫克组织蛋白每分钟在反应体系中使450nm处吸光值变化0.01为一酶活单位。
NAO(ΔOD450/min/mg prot)=ΔA÷(V1×Cpr)÷0.01÷T=250×ΔA÷Cpr
2、按样本鲜重计算:
酶活定义:每克组织每分钟在反应体系中使450nm处吸光值变化0.01为一酶活单位。
NAO(ΔOD450/min/g 鲜重)=ΔA÷(W×V1÷V)÷0.01÷T=250×ΔA÷W
3、按细菌或细胞密度计算:
酶活定义:每1万个细菌或细胞每分钟在反应体系中使450nm处吸光值变化0.01为一酶活单位。
NAO(ΔOD450/min /104 cell)=ΔA÷(500×V1÷V)÷0.01÷T=0.5×ΔA
V---加入提取液体积,1mL
V1---加入样本体积,0.02mL
T---反应时间,20min
W---样本质量,g
500---细胞或细菌,万
D---稀释倍数,未稀释即为1
Cpr---样本蛋白质浓度,mg/mL
注意事项:
1. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
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产品编号 | 产品名称 | 包装规格 |
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