NADH氧化酶(NOX)活性检测试剂盒 微板法
产品编号 | 产品名称 | 包装规格 | 价格 |
NBS8097-96T | NADH氧化酶(NOX)活性检测试剂盒 微板法 | 96T | 1969 |
产品简介:
NADH氧化酶(NOX,EC1.6.99.3)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,可在氧气存在下,直接将NADH氧化为NAD。该酶不仅参与NAD的再生,而且与免疫反应密切相关。
NOX能够将NADH氧化为NAD,通过检测NADH于340nm处的下降速率,即可得出NADH 氧化酶活性的大小。
保存条件:
-20℃保存,3个月有效。
产品组成:
试剂 | 规格 | 保存 | 备注 |
试剂一 | 100mL×1 瓶 | -20℃保存 | |
试剂二 | 20mL×1 瓶 | -20℃保存 | |
试剂三 | 16mL×1 瓶 | 4℃保存 | |
试剂四 | 粉末×1支 | 4℃保存 | 用前甩几下或离心使粉剂落入底部,再加1.5mL蒸馏水溶解备用。 |
试剂五 | 粉末×3支 | -20℃保存 | 用前甩几下或离心使粉剂落入底部,每支再加0.5mL蒸馏水溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融,三天内用完。 |
产品使用:
建议正式实验前,选取2个样本做预测定,了解实验样品情况,熟悉流程,避免样本和试 剂浪费!
一、线粒体制备(提示:整个线粒体的提取过程须保持4℃低温环境)
1. 称取约0.2g组织或收集1000万细菌/细胞,加入1mL试剂一,用冰浴匀浆器或研钵冰浴匀浆,转移至离心管后于4℃×3000g离心20min;
2. 小心吸取上清液(弃沉淀)移至另一离心管中,4℃×16000g离心20min。用移液器移除上清 液(上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的NOX(此步可选做))。 留下沉淀(沉淀即为线粒体)。
3. 在沉淀(线粒体)中加入200μL试剂二,超声波破碎(冰浴,功率20%或200W,超声5s,间隔3s,重复30次),液体置于冰上用于线粒体NOX酶活性测定。
【注】:若增加样本量,可按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:2.5~5的比例进行提取,或按照细菌/细胞数量(104):提取液(mL)为1000~2000:1的比例进行提取。
二、样品测定
1. 酶标仪预热30min以上,设定温度25℃,调节波长至340nm。
2. 所有试剂解冻至室温(25℃)。 3. 在96孔板中依次加入:
试剂名称(μL) | 测定管 |
试剂三 | 160 |
试剂四 | 10 |
试剂五 | 10 |
混匀,室温(25℃)静置3min | |
样本 | 20 |
混匀,室温(25℃)立即于340nm处读 取A1,5min后读取A2,△A=A1-A2 | |
【注】若△A小于0.01,可以延长反应时间T(如至10min或更长),则改变后的反应时间T需代入公式重新计算。
三、含量计算
1. 按样本蛋白浓度计算:
酶活定义:每毫克组织蛋白每分钟氧化1nmolNADH定义为一个酶活单位。
NOX(nmol/min/mg prot)=[ΔA÷(ε×d)×V2×109]÷(V1×Cpr)÷T=643.1×ΔA÷Cpr
2. 按样本鲜重计算:
酶活定义:每克组织每分钟氧化1nmolNADH定义为一个酶活单位。
NOX(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA÷(ε×d)×V2×109]÷(W×V1÷V)÷T=128.6×ΔA÷W
3. 按细菌或细胞密度计算:
酶活定义:每1万个细菌或细胞每分钟氧化1nmolNADH定义为一个酶活力单位。
NOX(nmol/min/104 cell)=[ΔA÷(ε×d)×V2×109]÷(500×V1÷V)÷T=0.26×ΔA
ε---NADH 摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm
d---96孔板光径,0.5cm
V---加入试剂二的体积,0.2mL
V1---加入样本体积,0.02mL
V2---反应体系总体积,2×10-4L
T---反应时间,5min
W---样本质量,g
500---细胞或细菌总数,万
Cpr---样本蛋白质浓度,mg/mL
注意事项:
1. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
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