琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒(离心柱法)
产品线 | 产品目录名称 | 规格 | 货号 | 目录价 |
核酸提取纯化 | 琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒(离心柱法) | 50 T | BK0009-01 | 260 |
产品介绍
本试剂盒适用于从TAE或TBE琼脂糖凝胶上回收DNA片段,同时除去蛋白质、其他有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质。采用特殊的 吸附膜和独特的缓冲液系统,选择性的吸附核酸分子,可回收100bp-30kb大小的片段,回收率可达80%以上。使用本试剂盒回收的DNA可适用 于各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、连接、转化、文库筛选和体外翻译等实验。
试剂名称 | 50 T |
平衡液 | 30 ml |
溶胶液 | 25 ml |
洗涤液 II | 15 ml |
洗脱液 | 10 ml |
吸附柱AP30 | 50 个 |
收集管 | 50 个 |
注意事项
1 使用前检查各组分是否出现沉淀。若有,请轻轻摇晃混合均匀,或37℃水浴重新溶解。
2 实验前使用平衡液处理吸附柱,可以充分激活硅胶膜,提高得率。平衡液处理过的柱子,最好当天使用,放置时间过长会影响效果。
3 电泳时应使用新的电泳缓冲液,以免影响电泳和回收效果。
4 如下一步实验要求较高,则应尽量使用TAE电泳缓冲液。
5 切胶时,紫外照射时间应尽量短,以免对DNA造成损伤。 2.6 如果回收率低,可在胶充分溶解后检测pH值,如pH值大于7.5,可向含有DNA的胶溶液中加10-30μl 3M醋酸钠(pH5.2)将pH值调到 5-7之间。
使用流程
柱平衡步骤
向吸附柱 AP30中(吸附柱放入收集管中)加入500μl平衡液,12,000rpm(~13,400×g)离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回 收集管中。(请使用当天处理过的柱子)。
提取步骤
1 将单一的目的DNA条带从琼脂糖凝胶中切下(尽量切除多余部分)放入干净的离心管中,称取重量。
2 向胶块中加入3倍体积的溶胶液(如果凝胶重为0.1g,其体积可视为100μl,则加入300μl溶胶液),50℃水浴放置,其间不断温和上下 翻转离心管,以确保胶块充分溶解。如果还有未溶的胶块,可继续放置几分钟或再补加一些溶胶液。
注意:为了提高结合效率,胶块完全溶解 后将溶液温度降至室温再上柱。
3 将上一步所得溶液用移液器转移到吸附柱AP30中(吸附柱放入收集管中),室温放置2min。12,000rpm(~13,400×g)离心1min,倒 掉收集管中的废液,将吸附柱AP30放入收集管中。
4 向吸附柱AP30中加入500μl洗涤液 II (请先检查是否加入无水乙醇),12,000rpm(~13,400×g)离心1min,倒掉收集管中的废液,将 吸附柱AP30放入收集管中。
5 重复操作步骤4。
6 将吸附柱AP30放入收集管中,12,000rpm(~13,400×g)离心2min,目的是将吸附柱中残余的洗涤液 II去除。将吸附柱AP30置于室温放 置数分钟,彻底晾干,以防止洗涤液 II中残留的乙醇影响下一步实验。
7 将吸附柱AP30置于一个干净的离心管中,向吸附柱膜的中间部位滴加50-100 μl洗脱液,室温放置2min,12,000rpm(~13,400×g)离心 1min,将DNA溶液收集到离心管中,如不立即进行下游实验,于-20℃保存备用。