人牙髓间充质干细胞成骨诱导分化试剂盒
Human Dental Pulp Stem Cells Osteogenic Differentiation Kit
产品编号 | 产品名称 | 包装规格 | 价格 |
NBS6006-200ml | 人牙髓间充质干细胞成骨诱导分化试剂盒 Human Dental Pulp Stem Cells Osteogenic Differentiation Kit | 200ml | 1700 |
产品简介:
本款人牙髓间充质干细胞成骨诱导分化培养基试剂盒,专门针对人牙髓间充质干细胞(DPSCs)进行配方优化,可高效诱导该细胞向成骨细胞方向分化。
为便于对诱导结果进行直观鉴定,本试剂盒配套提供茜素红染色液。茜素红是一种广泛应用于生物医学样本检验的示钙染剂,游离的钙离子不能与茜素红形成红色沉淀,而固化的钙质结节则能被染成红色。干细胞在诱导培养基作用下,会逐渐向骨细胞方向分化,产生明显的泌钙反应,形成钙盐结晶或钙质结节,均能被茜素红染色。
质检标准:
1. pH:7.2~7.4
2. 内毒素含量:<10EU/ml
3. 生物安全:细菌、真菌、支原体检测阴性
4. 质量检测:诱导测试合格
产品组成:
组分 | 名称 | 规格 | 保存 |
NBS6006-A | 人牙髓间充质干细胞成骨诱导分化基础培养基 Human Dental Pulp Stem Cells Osteogenic Differentiation Basal Medium | 175ml | 4℃避光,1年有效 |
NBS6006-B | 人牙髓间充质干细胞成骨诱导分化血清 Human Dental Pulp Stem Cells Osteogenic Differentiation FBS | 20ml | -20℃,2年有效 |
NBS6006-C | P/S Solution 双抗 | 2ml | -20℃,1年有效 |
NBS6006-D | Glutamine 谷氨酰胺 | 2ml | -20℃,1年有效 |
NBS6006-E | β-Glycerophosphate β-甘油磷酸钠 | 2ml | -20℃,1年有效 |
NBS6006-F | Ascorbate Acid 抗坏血酸 | 400μl | -20℃,1年有效 |
NBS6006-G | Dexamethasone 地塞米松 | 20μl | -20℃,1年有效 |
NBS6006-H | Dye Liquor: Alizarin Red Solution 茜素红染色液 | 10ml | 4℃避光,1年有效 |
注:1. 本产品组分均为无菌分装,可直接配制成完全培养基使用;染色液为独立包装组分,请勿与培养基混用。
2. 配制完全培养基前,请瞬时离心各管小剂量试剂以免损失,配制后请在有效期内使用完毕。
3. 完全培养基储存条件:2~8℃,避光;配制后有效期:3个月。
产品使用:
1. 成骨诱导分化操作
1.1 明胶包被培养器皿
干细胞培养较长时间后,可能会出现脱壁卷边或漂浮现象,建议使用 0.1% Gelatin Solution 0.1%明胶溶液(NBS0234)对培养器皿进行包被。
准备合适的培养器皿,取适量明胶覆盖底面,37°C静置30 min,吸取晾干即可使用。
1.2 接种干细胞
取对数生长期的细胞,按照2.0×104 cells/cm2的细胞密度接种至包被后的培养器皿中, 于 37℃,5% CO2培养环境下培养至汇合度 60~70%,弃掉上清,加入成骨诱导分化培养基。
1.3 细胞分化诱导
于37℃,5% CO2培养环境下培养约14~21天,每2~3天换液一次,并注意观察细胞形态变化。 根据细胞钙盐结晶析出和钙质结节形成的情况,决定终止细胞诱导的时间,并进行染色鉴定。
2. 染色鉴定
2.1 细胞固定
吸去培养基使用适量1×PBS清洗一次,弃去后取适量4%多聚甲醛溶液覆盖培养器皿底面,室温固定30~60 min,弃去固定液再使用1×PBS清洗两次。
2.2 茜素红染色
加入适量茜素红染色液染3~5 min,吸走茜素红染色液,用1×PBS清洗两次,并加入适量1× PBS避免细胞干燥。
2.3 诱导评估
显微镜下观察成骨染色效果,并进行图像采集和诱导评估。诱导成功时,钙质结节与茜素红染料结合后呈现红色或橘红色。
NOTE: 干细胞的成骨分化水平因细胞类型、细胞供体来源,培养条件、细胞代次、细胞状态和分化时间等因素而异。
注意事项:
为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
本产品仅用于生命科学研究,不得用于医学诊断及其他用途!
相关产品:
产品编号 | 产品名称 | 包装规格 |
100ml | ||
100ml | ||
200ml |