X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸环己胺盐(X-beta-D- glucuronide CHA salt)(NBS2004)

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X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸环己胺盐(X-beta-D- glucuronide CHA salt)(NBS2004)

X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸环己胺盐
NBS2004-100MG
NBS2004-1G
NBS2004-5G
品牌:NoninBio
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X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸环己胺盐(X-beta-D- glucuronide CHA salt)

——转基因植物最常用报告基因GUS显色底物,GUS染色定性研究

X-Gluc 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸环己胺盐

NBS2004-100MG

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品牌:NoninBio

作用机制:

X-Gluc,也称为5-Bromo-4-chloro-3-indoxyl-beta-D-glucuronide(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-葡糖苷酸),是β-葡萄糖苷酶(β-glucuronidase,GUS)的显色底物,由一种广泛使用的报告基因gusA(uidA)所编码。GUS水解X-Gluc,生成一种无色的葡萄糖醛酸和一种肉眼可见的氯-溴靛蓝(chloro-bromoindigo)深蓝色沉淀。利用这一特性,X-Gluc常用来检测植物细胞和组织中的GUS表达;另外,X-Gluc还能用来检测大肠杆菌引起的感染状况;或检测食物或水源是否受细菌污染。


主要应用:转基因植物报告基因GUS活性检测,X-gluc用作显色底物。

普遍应用优势在于:绝大多数植物细胞内不存在内源性的GUS活性,而且GUS基因表达产物具有检测方法简单、灵敏度高,易于定量及定性分析,能够与其他蛋白质基因融合等优势,因此,GUS基因为植物工程研究中应用最广泛的报告基因(报道基因)之一。

 

1. GUS活性检测(组织化学定位法,定性研究)

GUS催化底物X-gluc在酶活性位点生成深蓝色沉淀,为研究外源基因在植物中表达具体部位研究提供很好的研究手段。且GUS酶和显色产物非常稳定,植物中可以积累。

1.1 GUS染色液制备【作为参考,可按照具体实验条件来调整】

试剂名称

配制方法

用量

备注说明

X-Gluc储存液(10mg/ml)

溶解1mg X-gluc于0.1ml甲醇,低速漩涡充分溶解;

100μL

最早实验使用DMF作为X-gluc溶剂,但是有研究发现DMF会抑制GUS活性,使用甲醇作为溶剂可将GUS活性提高25%。

2x buffer

磷酸盐缓冲液pH 7.0 (0.1 M NaH2PO4/0.1 M Na2HPO4);

柠檬酸-盐酸溶液pH 7.0 (0.1 M sodium citrate/ 0.2 N HCl);

1ml

体外X-gluc活性(荧光定量染色)显示,使用柠檬酸盐酸溶液可将GUS活性提高20%。


0.1 M potassium ferrocyanide

将4.2239g亚铁氰化钾溶于水,定容至100ml。

20 μL

亚铁-/铁-氰化钾的最佳工作浓度需要摸索,建议最好起始工作浓度为1 mM。

0.1 M potassium ferricyanide

将3.2924g铁氰化钾溶于水,定容至100ml。

20 μL

10% Triton X-100


10 μL


H2O


850μL


 

1.2 GUS定性染色步骤

a)于预冷固定液(4%多聚甲醛溶液,新鲜制备)固定样本30min,偶尔摇晃或置于低速摇床上固定;

b)使用预冷的1×磷酸盐或柠檬酸盐酸溶液清洗固定样本30-60min,中间更换几次清洗液;

c) 真空渗透法将X-Gluc染色液加入待染色样本【对于组织培养的拟南芥不需用真空渗透;】黑暗条件室温或者37°C孵育几小时或过夜,或者明显的蓝色沉淀出现(不超过24h);

d)去离子清洗染色样本;

e) 对于绿色样本,使用70%乙醇脱色直到叶绿体完全去除,然后转移到去离子水内清洗;对于种子或其他样本,参考文献An Improved Clearing Method for GUS Assay inArabidopsis Endosperm and Seeds的替代方法;

f) 肉眼或显微镜下观察,白色背景上的蓝色小点即为GUS表达位点。


2.  GUS活性检测(荧光分析法,定量研究)

GUS催化荧光底物MUG 4-甲基伞型酮-beta-D-葡糖苷酸,将其水解为4-MU(4-甲基伞型酮)和β-D-葡萄糖醛酸。4-MU中的羟基解离后在365nm的光激发下产生455nm的荧光。此时用荧光分光光度计测定得到的是相对值,因此同时需要用标准物4-MU进行校准。

荧光定量分析GUS活性有两种基本方法:

1)在一个时间点测定GUS酶作用产物的总荧光量,需要设定空白对照,以消除内源荧光强度;

2)测定一段时间内GUS的动力学过程。在酶反应初始阶段,酶作用产物与时间呈线性关系,而内源性荧光物质的荧光量与时间无线性关系。由此可计算GUS酶活力。GUS酶活性通常以μg MU/min/mg蛋白质。有时也可以用样本的鲜重来表示。


2.1  检测步骤【仅作参考,根据具体实验条件做适当调整

a)取约100mg愈伤组织或一片新鲜叶盘于1.5ml离心管内,加入100μl萃取缓冲液(extraction buffer)内匀浆。可加入少量沙子或玻璃珠提高研磨效率。

萃取缓冲液(extraction buffer)配方:50mM磷酸盐缓冲液(pH 7.0),10mM DTT,1mM Na2EDTA,0.1%十二烷基肌氨酸,0.1% Triton X-100

b)4°C,15,000rpm离心5min。收集上清转移到另一干净的1.5ml离心管,冰上放置待用。

c) 取50μl上述萃取上清到0.5ml 37°C预热的反应缓冲液(Assay buffer);用移液枪吹匀或漩涡混匀。

反应缓冲液(Assay Buffer):称取17.6mg MUG溶于50ml萃取缓冲液,此时即为1mM MUG反应液。4°C保存,2周稳定。

d)在某一时间段内(高GUS活性样本30min;或低GUS活性1h-过夜;)吸取100μl溶液到含900μl终止液(Stop Buffer)的1.5ml离心管内,做好标记。有可能采集3-4个时间点和过夜孵育的时间点荧光量。【用荧光分光光度计在激发波长365nm、发射波长455nm下,狭缝10nm时测定不同时间点的荧光强度值。】

e)以荧光强度值对反应时间作曲线,求出单位时间的荧光强度变化。用单位时间的荧光强度变化除以参加反应的蛋白量,求出单位质量的蛋白单位时间的荧光强度变化。


基本特性:

1)CAS NO:114162-64-0

2)英文同义名:5-bromo-4-chloro-3-indolyl-beta-D-glucuronic acid, cyclohexylammonium salt;X-beta-D- glucuronide CHA salt;X-Gluc CHA Salt; X-glu CHA Salt; X-glcA CHA Salt; BCIG CHA Salt;

3)分子式:C14H13BrClNO7 • C6H13N

4)分子量:521.79g/mol

5)纯度:>99%(HPLC)

6)外观:白色至类白色结晶性粉末

7)溶解性:DMF、甲醇

8)化学结构式:


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