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Magneti-Q Myc 标签蛋白纯化试剂盒

产品介绍
1 Magneti-Q商标
Magneti-Q商标来自于磁性（Magnetic）的英文谐音，Q为琼脂糖的汉语拼音的首字母，因此本公司带有这一商标的产品，均为琼脂糖材质的磁性 微球。这一商标主要用于一系列基于抗体亲和方法的标签蛋白纯化试剂盒，目前已有 Anti-His-tag、Anti-Myc-tag、Anti-HA-tag、 Anti-DYKDDDDK-tag四种标签蛋白纯化试剂盒。

2 Myc标签
人的 c-Myc基因是 Myc基因家族的重要成员之一，他与多种肿瘤发生发展有关，Myc是一个比较大的蛋白，人的 Myc蛋白分子量在 50-70 kDa， Myc标签由来源于人 Myc蛋白 E424-L433的十个氨基酸（EQKLISEEDL）组成，该肽段分子量为 1.2 KDa。利用重组 DNA技术，它可以连接 在融合蛋白的 N端或者 C端，有利于对目的蛋白进行纯化和检测。

3 Anti-Myc抗体
Anti-Myc抗体可以用于检测和 Myc标签融合表达蛋白的表达、细胞内定位，也可以用于 Myc融合表达蛋白的纯化、定性或定量检测。本公司的 Anti-Myc亲和力非常高，适合做 WB、IP等蛋白互作实验。

4 磁珠性质

Magneti-Q Anti-Myc Beads是将高浓度的 Myc抗体偶联至琼脂糖磁珠上，可直接用于 Myc融合蛋白的纯化。

5 试剂盒组分
本产适用于原核和真核细胞裂解物或者培养上清中分泌表达的 Myc标签蛋白的纯化。也可以用于 IP、Co-IP等蛋白质相互作用实验。

使用方法

1 缓冲液配制
1×PBST配置：将 PBST缓冲液（10×)用 ddH₂O稀释 10倍使用。如：配置 10ml 1×PBST，具体操作为取 1ml PBST缓冲液（10×),加入 9ml ddH₂O，充分混匀标记为 1×PBST即可使用。实验未用完的 1×PBST可稳定保存在 2-8℃ 3个月，保存时间过久易长菌。

2 清洗磁珠
1) 将磁珠充分混匀后取 100 μl磁珠混悬液置于离心管中放磁力架上静置，待磁珠完全吸附后，吸弃上清；
2) 加入 500 μl 1×PBST轻轻颠倒混匀 3次；
3) 将离心管置于磁力架上，待磁珠完全吸附后，吸弃上清；
4) 重复上述操作重复 3次。
注：可根据样本量放大磁珠混悬液的体积（如：1ml样本加入100 μl磁珠混悬液；2ml样本加入 200μl磁珠混悬液)。

3 样品前处理
真核表达的分泌蛋白可直接取培养上清离心。真核或原核表达的胞内蛋白可用裂解液或超声的方法破碎细胞后离心取上清，再进行后续步骤。若样 品中含有核酸杂质会吸附在磁珠上，导致杂蛋白变多。除去核酸常用两个方法：
1）充分超声可以打断核酸，但过度超声也会造成蛋白降解；
2）使用伯仪生物超级核酸酶消化，这一方法需要注意缓冲液的选择。低浓度非离子型表面活性剂，如吐温-20、曲拉通-100可以帮助分散脂类团 块，有助于获得更纯的目的蛋白。

4 样品孵育
1) 向上述漂洗好的磁珠中加入 1ml样品，2-8℃或常温下孵育 30-60min（建议在旋转混匀仪上孵育，使样品和磁珠充分接触）；
2) 孵育结束后，将离心管置于磁力架上，待磁珠全部吸附后，将上清转移至新的离心管中，留样备检；
3) 向离心管中加入 500 μl 1×PBST，轻轻颠倒混匀 5-10次后将离心管置于磁力架上，待磁珠完全吸附后弃去上清；
4) 重复上述操作重复 5次。
注：蛋白纯化需要控制温度，在 2-8℃下孵育有助于防止蛋白降解。操作时间也至关重要，有时候快速进行实验比加入蛋白酶抑制剂更能保护目的 蛋白。建议样品孵育时间不要超过 60分钟，磁珠每次洗涤，加入洗杂缓冲液后可以冰上静置 3-5分钟，使杂蛋白从磁珠孔隙中充分溶出。

5 蛋白洗脱
1) 每 100μl磁珠混悬液加入 40μl洗脱液，常温或 4℃洗脱 5-10min，期间轻轻混匀 3-5次；
2) 孵育结束后将离心管置于磁力架上，待磁珠完全吸附后，吸取上清至新的离心管中，重复洗脱三次。洗脱蛋白需要分管收集，分别电泳确定纯 度。

6 洗脱缓冲液的选择
1) Elution BufferA（pH3.0）可有效打开抗体与标签之间的相互作用，但由于大部分蛋白仅能耐受 pH5.5以上的条件，酸洗脱对保持标签蛋白的活 性有害，如果不确定融合蛋白可以耐受 pH3.0的酸性缓冲液如甘氨酸缓冲液或者柠檬缓冲液，可以进行预实验。根据我们的经验，不推荐酸性 pH洗 脱，酸洗脱经常造成融合蛋白沉淀在填料孔隙中，洗脱后要尽快进行中和（试剂盒中配有 Tris中和液）。
2) Elution Buffer B洗脱可以获得有活力的蛋白,但由于多肽成本较高且在 2-8℃保存时可能出现降解，试剂盒中不提供 Elution Buffer B，如需 要可单独购买 Myc多肽配制。多肽竞争洗脱的效率较低，通常仅有 50%左右蛋白可以洗脱。
3) Elution Buffer C为高盐竞争洗脱，可以获得更高洗脱效率，同时也可以保留标签蛋白的活力，但有些蛋白可能在高盐条件下沉淀，且高盐条件 可能抑制蛋白质之间相互作用或者干扰酶活，所以洗脱产物要及时进行透析处理，或者使用本公司的脱盐柱进行缓冲液切换。高盐竞争洗脱效率高、 成本低，可以优先考虑。
4) Elution Buffer D含有高浓度尿素以及去垢剂，可以充分洗脱标签蛋白，但大部分蛋白在这个条件下都会失去活力，仅适合不需要蛋白活力的质 谱鉴定、WB等实验。

注意事项
1) 本产品保存在 2-8℃冰箱中，不可冻结保存；
2) 本产品出现轻微团聚属正常现象，可正常使用；
3) 本产品不要使用含有 DTT等还原剂的细胞裂解液样品，DTT可能会导致抗体配体的脱落；
4) 本产品能耐受≤2M尿素，高浓度的尿素会导致抗体配体脱落；
5) 在清洗和洗脱时避免吸取到磁珠，清洗时吸取到磁珠会影响最终的载量，洗脱时吸取到磁珠会影响目的蛋白的质量和电泳效果，第一次洗脱后可以将洗脱液置于新的离心管中，再次置于磁力架上进行吸附；
6) 本产品不能够直接高温加热磁珠，高温加热磁珠将造成抗体大量脱落，后进行电泳条带较多，影响对实验结果的判断。

参考信息
1 分泌蛋白纯化：
1) 取 2ml培养基上清，高速离心去除颗粒沉淀；
2) 加入已经漂洗过的 100 μl磁珠悬浮液，混合均匀后放置旋转混匀仪上，室温孵育 1h；
3) 将含有磁珠的样品管转移到磁力架上，待磁珠完全吸附后，吸弃上清；

4) 用 1×PBST清洗 5次后加入不同的洗脱液，每次洗脱孵育 10 min，重复洗脱三次；

5) 对洗脱产物进行 SDS-PAGE电泳，

2 胞内蛋白纯化：
1) 取 3×10^7细胞 1ml，加入含有超级核酸酶(1μg/ml)的细胞裂解液，裂解 10min，离心取上清；
2) 加入已经漂洗过的 100 μl磁珠混悬液，混合均匀后放置旋转混匀仪上，室温孵育 1h；
3) 将含有磁珠的样品管转移到磁力架上，待磁珠完全吸附后，吸弃上清；
4) 用 1×PBST清洗 5次后加入不同的洗脱液，每次洗脱孵育 10min，重复洗脱三次；
5) 对洗脱产物进行 SDS-PAGE电泳。

常见问题与解答
1 聚合物磁珠和琼脂糖磁珠有何区别？
1) 琼脂糖磁珠是带孔微球，粒径在 30-100 μm，交联时很大一部分配体会进入球孔内部，所以偶联载量相对较高，非常适用蛋白的快速纯化；而 聚合物磁珠通常粒径为 1-3 μm以下，配体主要分布在微球表面，这种类型的磁珠能够快速结合蛋白，空间位阻影响小，非常适合于蛋白互作实验， 但其载量不高；
2) 我们推荐使用琼脂糖磁珠进行蛋白纯化实验；使用聚合物磁珠进行蛋白互作实验如 IP、Co-IP和 pull down实验等。

2为何纯化不到目的蛋白？
1) 可能是由于蛋白表达量低造成的，建议在纯化前用 WB或者 SDS-PAGE检测下蛋白原始表达量，如果 WB信号很弱或者无信号，目的蛋白很难纯化到；
2) 可能由于洗脱方式不正确造成，建议根据自己的实验目的进行洗脱，如果多肽竞争洗脱（Elution Buffer B）检测不到目的蛋白可以尝试 Elution Buffer C进行洗脱；
3) 样本中有高浓度的还原剂等干扰物质，建议用合适的裂解液。

3为什么不建议高温加热磁珠？
1) 本产品由生物素化抗体与 SA琼脂糖磁珠偶联制备而成，如果直接煮球会造成 Sa、抗体失活脱落，在 SDS-PAGE胶上出现很多条带，从而影 响目的条带的判断；
2) 为了解决煮球的问题，我们推荐 Elution Buffer D缓冲液，这个缓冲液会导致少量配体的脱落，但不会影响后续结果的判断，适用于考马斯亮蓝 或者 WB检测。

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